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LumiZol Reagent 設計用于從各種來源（植物、動物、細菌和酵母）的細胞和組織樣品中快速分離 RNA、DNA 和蛋白質。 LumiZol Reagent 是一種含有苯酚、異硫氰酸胍以及分離高質量核酸和蛋白質所需的其他成分的溶液。苯酚和異硫氰酸胍可裂解細胞并有效抑制核糖核酸酶，從而保持 RNA 完整。均質化并添加氯仿后，樣品分離成上層水相、中間相和下層有機相。 RNA 可以用異丙醇從上相沉淀，而 DNA 和蛋白質可以分別用乙醇和異丙醇從中間相和下層有機相沉淀。
植物和動物組織——30-100毫克；
貼壁真核細胞 — 1×10 5至 1×10<sup7< sup="" style="box-sizing: border-box;">;
懸浮真核細胞、酵母 — 5×10 6至 10×10 6；
細菌細胞 — 1×10 7。
使用新鮮或液氮速凍樣品以獲得最佳 RNA 分離效果。在 LumiZol 試劑中均質化之前，請勿解凍樣品。
根據您的起始材料在 LumiZol 試劑中裂解樣品：
組織：在 1 mL LumiZol 試劑中勻漿組織樣本，并將勻漿轉移至新的 1.5 mL 管中。
細胞：棄去培養基，用 0.5–1 mL LumiZol 試劑重懸細胞沉淀或單層細胞，然后將裂解物轉移至新的 1.5 mL 試管中。
（可選）如果樣品脂肪含量高，則將裂解液在 4 °C 下以 12,000 × g 離心 5 分鐘，然后將上清液轉移至新的 1.5 mL 管中。
將管在室溫下孵育 5 分鐘。
向裂解液中添加 0.2 mL 氯仿（每 1 mL 用于裂解的 LumiZol 試劑），通過翻轉管充分混合，并在室溫下孵育 2 分鐘。
將管在 4°C 下以 12,000 × g 離心 15 分鐘。離心后，混合物分成兩相：無色水相和黃色有機相，其間有中間相。
將上層水相轉移至新的 1.5 mL 管中，不要接觸間相。如果樣品中RNA的量非常少，則在水相中添加共沉淀劑。保留有機相和界面用于 DNA 和蛋白質提取。
向水相中加入0.8體積的異丙醇，充分混合，并在室溫下孵育10分鐘。
將管在 4°C 下以 12,000 × g 離心 10 分鐘。
棄去上清液，向 RNA 沉淀中加入 1 mL 70% 乙醇，充分混勻，并在 4 °C 下以 7,500 × g離心管 5 分鐘。
棄去上清液，將 RNA 沉淀風干 5-10 分鐘。
將 RNA 沉淀溶解在 50–100 μL 無 RNase 水中。
除去“RNA 分離"部分步驟 5 中獲得的界面上的任何剩余水相。
向界面相和有機相中添加 0.3 mL 100% 乙醇（每 1 mL 《RNA 分離》步驟 1 中使用的 LumiZol 試劑），通過翻轉管混合，并在室溫下孵育 2-3 分鐘。
將管在 4 °C 下以 2,000 × g 離心 5 分鐘。將上清液轉移至新的 1.5 mL 管中。上清液可用于后續的蛋白質提取。
將 DNA 沉淀重懸于 1 mL 檸檬酸鈉/乙醇溶液（10% 乙醇中的 0.1 M 檸檬酸鈉，pH 8.5）中。
孵育 30 分鐘，偶爾混合。
將管在 4 °C 下以 2,000 × g 離心 5 分鐘。丟棄上清液。
再重復一次步驟 4-6。
將 1 mL 70% 乙醇添加到 DNA 沉淀中，充分混勻，然后在 4 °C 下以 2,000 × g離心管 5 分鐘。
棄去上清液，將 DNA 沉淀風干 5-10 分鐘。
將 DNA 沉淀重懸于 0.3–0.6 mL 的 8 mM 氫氧化鈉中。
將管在 4 °C 下以 12,000 × g 離心 10 分鐘，將上清液轉移至新的 1.5 mL 管中，并用 Tris-HCl 緩沖液將 pH 調節至 7–8 [添加 5 μL 1 M Tris-HCl 緩沖液（pH 4.5）至300μL DNA溶液]。
向《DNA 分離》部分第 3 步獲得的上清液中添加 1.5 mL 異丙醇（每 1 mL 《RNA 分離》步驟 1 中使用的 LumiZol 試劑），通過翻轉管充分混合，并孵育 10分鐘在室溫下。
將管在 4°C 下以 12,000 × g 離心 10 分鐘。丟棄上清液。
將蛋白質沉淀重新懸浮在 2 mL 鹽酸胍/乙醇溶液（0.3 M 鹽酸胍于 95% 乙醇中）中。
將管在室溫下孵育 20 分鐘。
將管在 4 °C 下以 7,500 × g 離心 5 分鐘。丟棄上清液。
再重復步驟 3-5 兩次。
向蛋白沉淀中加入 2 mL 100% 乙醇，充分混勻，室溫孵育 20 分鐘。
將管在 4 °C 下以 7,500 × g 離心 5 分鐘。丟棄上清液。
將蛋白質沉淀風干 5-10 分鐘。
將蛋白質沉淀溶解在含有 SDS 的緩沖液中（例如，用于將蛋白質樣品加載到聚丙烯酰胺凝膠上的樣品緩沖液）。
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